乌苏里白鲑肝脏表达抗菌肽Leap-2基因的克隆及细菌感染后的组织表达分析

刘恩慧1,黄天晴1,谷伟1,王炳谦1,张艳萍2,李春雨3,徐革锋1*

(1.中国水产科学研究院黑龙江水产研究所 农业农村部淡水水产生物技术与遗传育种重点实验室,黑龙江 哈尔滨 150070;2.甘肃省水产研究所,甘肃 兰州 730030;3.新疆天蕴有机农业有限公司,新疆 伊犁 835708)

摘要:为探究乌苏里白鲑Coregonus ussuriensis Berg肝脏表达抗菌肽Leap-2基因的分子结构和表达特征,采用PCR技术从乌苏里白鲑(体质量为30.0 g± 1.2 g) 肝脏组织中扩增Leap-2基因的开放阅读框(ORF),使用生物信息学软件对其编码的氨基酸序列进行分析,通过荧光定量PCR(qRT-PCR) 检测其在健康组织及嗜水气单胞菌Aeromonas hydrophila、杀鲑气单胞菌Aeromonas salmonicida和金黄色葡萄球菌Staphylococcus aureus感染后的组织表达变化。结果表明:采用PCR方法从乌苏里白鲑肝脏中克隆得到Leap-2基因的ORF区(GenBank:MZ170050),片段长度为276 bp,可编码91个氨基酸,其成熟肽区域包含4个高度保守的半胱氨酸残基;系统进化分析显示,乌苏里白鲑的Leap-2氨基酸序列与银鲑Oncorhynchus kisutch的亲缘关系较近,且具有较高的同源性,一致性为96.7%;乌苏里白鲑肝脏中的Leap-2基因表达量最高,其次为肠和肾,肌肉中的基因表达量最低;3种细菌感染导致Leap-2在各组织中的表达均有所上调,Western blot检测也显示,Leap-2蛋白水平在24 h内表达上调。研究表明,Leap-2基因参与了乌苏里白鲑应对外源干扰的免疫反应,本研究结果可为解析乌苏里白鲑应对病原体的免疫应答机制提供科学参考。

关键词:乌苏里白鲑;抗菌肽;Leap-2基因;嗜水气单胞菌;杀鲑气单胞菌;金黄色葡萄球菌;荧光定量

抗菌肽(antimicrobial peptides,AMP) 是宿主黏膜表面的一类重要防御因子,是机体自身免疫系统的重要组成部分。与传统的抗生素相比,抗菌肽表现出对更多病原体(病毒、真菌和寄生虫等) 的防御作用,具有无污染、无残留特性,且在细菌中不易产生耐药性[1-2]。近年来,随着中国水产业不断走向规模化和集约化,鱼类人工养殖过程中水质污染、病害暴发、品质降低等问题严重制约了行业的健康发展[3],另一方面,水产品中的药物积累也将威胁消费者的健康。抗菌肽作为水产动物自身免疫的关键组成部分,可保护鱼类免受微生物病原体的危害[4-5],将其作为抗生素的替代产品已成为行业研究的热点。

肝脏表达抗菌肽(liver-expressed antimicrobial peptide,Leap) 是一类富含半胱氨酸的抗菌肽,其在肝脏中大量转录表达。2003年,Krause等 [6-7]首次从人类的血液中分离出两种亚型,即Leap-1和Leap-2,其分别包含8个和4个保守的半胱氨酸残基。目前,相较于Leap-1,Leap-2的相关研究较少。在水产动物中,Leap-2已经在草鱼Ctenopharyngodon idellus[8]、鲤Cyprinus carpio[9]、褐鳟Salmo trutta[10]、虹鳟Oncorhynchus mykiss[11]、大黄鱼Larimichthys crocea[12]和卵形鲳鲹Trachinotus ovatus[13]等多个物种中被分离鉴定。抗菌肽Leap-2通过破坏细菌膜结构的完整性从而发挥抗菌活性[14],是免疫系统抵御微生物入侵的重要组成部分[15-16]

乌苏里白鲑 Coregonus ussuriensis Berg 是一种具有较高营养价值和经济价值的冷水性鱼类,主要分布于中国黑龙江流域、俄罗斯的西伯利亚和萨哈林等水系[17-19]。近年来,由于过度捕捞和栖息地破坏,乌苏里白鲑的野生资源已严重衰退。1988年,该鱼被列入《中国濒危动物(鱼类)红皮书》名录,定为“易危”级物种[19]。人工繁殖过程中研究人员发现,乌苏里白鲑具有较强的病原抵抗能力,因此,针对该鱼的非特异性免疫反应展开进一步研究,鉴定相关免疫因子的抗菌活性,可为该物种大规模养殖中的疾病防治提供重要参考。本研究中,通过对乌苏里白鲑的肝脏表达抗菌肽Leap-2的克隆,探究了其在乌苏里白鲑不同组织中的表达差异,并检测了在嗜水气单胞菌、杀鲑气单胞菌和金黄色葡萄球菌感染后的Leap-2表达模式,以期为开发乌苏里白鲑抗菌肽奠定基础,并为了解乌苏里白鲑对病原体的免疫应答机制提供理论参考。

1 材料与方法

1.1 材料

试验用乌苏里白鲑幼鱼(体长为15.0 cm±1.5 cm、体质量为30.0 g± 1.2 g) 取自黑龙江水产研究所渤海冷水性鱼类试验站(牡丹江),带水充气运回实验室,饲养在循环控温水族箱(180 cm×60 cm×50 cm)中。试验期间,水温为(18.0±0.2)℃,溶解氧为(7.8~10.0)mg/L,pH为7.2~7.5。日投喂2次,投饵量为鱼体质量的2%,试验前24 h停止投喂。

1.2 方法

1.2.1 乌苏里白鲑Leap-2基因的克隆 基因克隆设计引物,参考虹鳟Oncorhynchus mykissLeap-2(GenBank:AY362187.1),采用Primer 5.0 软件设计特异性引物(表1)。使用1尾乌苏里白鲑的肝脏组织cDNA作为克隆模板,通过PCR扩增Leap-2基因。PCR反应程序:94 ℃ 下预变性2 min;94 ℃下循环变性30 s,57 ℃下退火复性30 s,72 ℃下延伸30 s,共进行29个循环;最后再在72 ℃下延伸5 min。将PCR产物克隆到pMD-18T载体中进行测序(苏州泓迅生物公司)。

表1 Leap-2基因克隆和表达引物

Tab.1 Primer of cloning and expression of Leap-2 gene

引物primer序列sequence(5′-3′)虹鳟Leap-2FCACCGAATTTTCCAGAGCATATC虹鳟Leap-2RCACCATGTCTGGGAAGATTCTTG乌苏里白鲑Leap-2FTACAGCAAAGCAACGCAAGG乌苏里白鲑Leap-2RAAATGGTCTCGGCAGTAGGCβ-actin-FCTCACCGACTACCTGATGAAGATCβ-actin-RGTAGCACAGCTTCTCCTTGATGTC

1.2.2 Leap-2氨基酸序列分析 对克隆得到的乌苏里白鲑Leap-2基因编码的氨基酸序列,通过NCBI BLAST软件进行序列比对(http://www.ncbi.nlm.nih.gov)。采用DNAMAN 6.0软件进行多个氨基酸序列的比对,采用MEGA 6.0软件构建系统发育树[20],bootstrap值设定为1 000。采用在线分析软件SignalP 4.0(http://www.cbs.dtu,dk/services/SignalP/)预测序列信号肽,采用ExpASy(http://web.expasy.org/compute_pi/)预测蛋白的分子量和pI值,采用在线软件MEME(http://meme-suite.org/tools/meme)进行保守结构域分析。

1.2.3 细菌攻毒试验 将攻毒所用的健康鱼分为4组,3个试验组分别注射嗜水气单胞菌Aeromonas hydrophila、杀鲑气单胞菌Aeromonas salmonicida和金黄色葡萄球菌Staphylococcus aureus,菌液培养至浓度为1×106 CFU/mL时用于试验鱼腹腔的感染注射,每尾鱼注射100 μL,对照组注射等体积的PBS溶液。每个试验设置3个重复,每个重复6尾鱼。在细菌攻毒后的0、2、4、8、12、24、48、72 h分别采集对照组和试验组的性腺、肠、肝脏、心、皮肤、脾、鳃、肾和肌肉组织,无菌取样,用液氮速冻后于-80 ℃超低温冰箱中保存备用。

1.2.4 荧光定量PCR(quantitative real-time PCR,qRT-PCR) 为分析乌苏里白鲑Leap-2的表达,采用FastStart Universal SYBR®Green Master Mix(Rox)进行实时定量PCR。PCR反应条件:95 ℃下预变性10 min;95 ℃下循环变性15 s,60 ℃下退火复性30 s,共进行 40个两步循环。以β-actin作为内参基因。引物是通过Primer Premier 5.0(Premier Biosoft Internation ) 设计,荧光定量PCR所用引物见表1。

1.2.5 Western blot检测 从注射嗜水气单胞菌0、4、12、24、48、72 h 6个时间点的肝脏组织中提取总蛋白,各组蛋白在SDS-PAGE缓冲液中煮沸20 min充分变性后,用质量分数为12%的SDS-PAGE凝胶分离,电泳结束后,将蛋白转移到PVDF膜上,并通过Western印迹分析。以抗Leap-2(Ab199946,Abcam,1∶1 000)和β-微管蛋白(β-tubulin,yt4780,Immunoway,1∶10 000)为一抗,以山羊抗兔抗体IgG(1∶2 000) 为二抗。经Western印迹洗涤液PBST充分漂洗后,采用ECL试剂盒进行显色,再用灰度分析软件Image J对目的条带进行分析,以β-tubulin作为内参,每个样本设置3次重复。

1.3 数据分析

采用2-ΔΔCt法进行基因相对定量。试验数据以平均值±标准差(mean±S.D.)表示,采用SPSS 22.0软件进行单因素方差分析,采用Duncan法比较各组织间基因表达量的差异显著性,采用T检验法比较攻毒后基因在各时间段的差异显著性。显著性水平设为0.05,极显著性水平设为0.01。

2 结果与分析

2.1 Leap-2基因的克隆及序列分析

采用PCR方法从乌苏里白鲑肝脏中克隆得到Leap-2的ORF区,将其命名为乌苏里白鲑Leap-2 (GenBank:MZ 170050)。乌苏里白鲑Leap-2的ORF区片段长度为276 bp,可编码91个氨基酸,预测的蛋白相对分子质量为10 190,等电点pI为9.96。同其他物种相似,乌苏里白鲑Leap-2氨基酸具有保守的氨基酸结构,N-端的26个氨基酸残基为信号肽部分,随后的24个氨基酸残基为前体肽部分,C-端的41个氨基酸为成熟肽区域,其中包括4个高度保守的半胱氨酸残基(图1)。

利用MEGA软件基于NJ算法构建乌苏里白鲑Leap-2系统进化树,结果显示,乌苏里白鲑与虹鳟、银鲑 Oncorhynchus kisutch、红大麻哈鱼O.nerka的亲缘关系较近(图2(a))。多序列比对显示,乌苏里白鲑的Leap-2氨基酸序列同银鲑的一致性最高(96.7%),与虹鳟和大西洋鲑Salmo salar的一致性分别为95.6%、94.51%。利用在线软件MEME对10个物种的蛋白保守结构域进行分析,结果显示,乌苏里白鲑的Leap-2氨基酸序列与银鲑、虹鳟、红大马哈鱼、褐鳟和大西洋鲑的氨基酸序列结构一致(图2(b))。

图2 Leap-2氨基酸序列结构分析
Fig.2 Structure analysis of Leap-2 amino acid sequence

箭头指向4个保守的半胱氨酸残基。The arrow shows the four conserved cysteine residues.
图1 乌苏里白鲑与其他物种Leap-2氨基酸的多序列比对
Fig.1 Multiple alignment of amion acid sequence of Leap-2 between Ussuri cisco Coregonus ussuriensis and other species

2.2 Leap-2基因在不同组织中的表达分析

荧光定量PCR结果显示,Leap-2基因在乌苏里白鲑的心、肠、肝脏、肾、肌肉、脾、皮肤、鳃、性腺9个组织中均有表达。以心脏组织为参照,计算乌苏里白鲑Leap-2在其他各组织的相对表达量。其中,在肝脏中的相对表达量显著高于其他组织(P<0.05),其次是肠和脾,在肌肉中表达量最低,肝脏中表达量是肌肉中的106.12倍(图3)。

标有不同字母者表示组间有显著性差异(P<0.05),标有相同字母者表示组间无显著性差异(P>0.05)。
Note:The means with different letters are significantly different in the groups at the 0.05 probability level,and the means with the same letter are not significant differences.
图3 Leap-2基因在乌苏里白鲑不同组中的相对表达量
Fig.3 Relative expression levels of the Leap-2 in different tissues of Ussuri cisco Coregonus ussuriensis

2.3 Leap-2基因在细菌感染后的组织表达变化

本研究中,选用革兰氏阴性菌(嗜水气单胞菌、杀鲑气单胞菌)和革兰氏阳性菌(金黄色葡萄球菌)进行细菌攻毒试验。从图4可见:与对照组相比,注射嗜水气单胞菌后4 h时,肝脏和脾中的Leap-2基因表达量极显著上调(P<0.01),分别为对照组的3.91、9.54倍,8 h时,皮肤、肾和肠中的表达量极显著提升(P<0.01),肝脏、鳃、脾、皮肤、肾、肠组织中的最高表达量分别为对照组的6.88、14.60、9.54、53.81、8.61、7.54倍;经杀鲑气单胞菌感染后,Leap-2基因在6种组织中的表达量均表现出不同程度的上调,注射后24 h时肝脏中的表达量是对照组的16.48倍,4 h时脾中的表达量是对照组的13.76倍,随后表达量呈下降趋势,在48 h时恢复至对照组水平;与对照组相比,金黄色葡萄球菌的感染同样诱导了Leap-2基因在6种组织中的表达上调,注射后2 h时,鳃和脾中的表达量显著上调(P<0.05),之后脾中的表达量呈持续上调,48 h时为对照组的19.20倍。

2.4 嗜水气单胞菌感染后肝脏中Leap-2蛋白表达

为了进一步验证Leap-2蛋白在乌苏里白鲑应对病原物侵染时的免疫应答反应,本研究中提取了嗜水气单胞菌注射后0、4、12、24、48、72 h乌苏里白鲑肝脏中的Leap-2蛋白,以β-tubulin为内参,利用Western blot检测Leap-2蛋白表达量的变化。结果显示,在4、12、24 h时蛋白相对表达量明显高于对照组,而48 h后蛋白表达量下调,该结果证实了细菌感染能够诱导Leap-2蛋白在乌苏里白鲑体内的表达上调(图5)。

3 讨论

3.1 Leap-2氨基酸序列分析

本研究中,分析了乌苏里白鲑肝脏表达抗菌肽Leap-2氨基酸序列,同源性比对发现,其Leap-2与银鲑的序列相似性较高,一致性可达96.7%。此外,同虹鳟、褐鳟、大麻哈鱼的一致性均能达到90%以上,这说明Leap-2在鲑鳟鱼类的进化中保持较高的保守性。王珊珊等[21]对人的Leap-2进行生物信息学分析发现,在不同物种中,Leap-2的信号肽和前体肽差异较大,但成熟肽相似度较高,推测成熟肽区域是蛋白质发挥作用的关键。此外,氨基酸结构分析显示,乌苏里白鲑Leap-2在成熟肽区域具有4个保守的半胱氨酸,这与文献[22]报道的Leap-2的典型结构特点一致。研究表明,成熟肽区域的4个半胱氨酸残基可能形成两个二硫键,用于支撑β-发夹和螺旋结构,对核心结构的完整性和稳定性具有重要作用[23]。根据Li等[13]对Leap-2氨基酸序列结构的分析,本研究中乌苏里白鲑的Leap-2成熟肽4个半胱氨酸在C67与C78、C73与C83可能形成二硫键,这种二硫键形成方式与草鱼和鲤中的预测结构一致[8-9]。推测乌苏里白鲑的Leap-2可能与其他鱼类具有相似的功能。

目前,在乌苏里白鲑中仅发现了一种Leap-2,而在其他鱼类中报道了该蛋白的多种类型。如虹鳟中分离出了Leap-2A、Leap-2B和Leap-2C 3种亚型[11];鲤中鉴定得到的Leap-2A和Leap-2B 2种亚型[9],西伯利亚鲟中鉴定出了Leap-2AB和Leap-2C 2种亚型,且Leap-2AB型表现出更强的抗菌活性[16]。结合NCBI序列比对结果,乌苏里白鲑Leap-2与虹鳟的Leap-2B亚型(NP.001117937.1)同源性为95.6%,由此推测,本研究中所克隆的乌苏里白鲑的Leap-2为B型。

*表示与对照组有显著性差异(P<0.05);**表示与对照组有极显著性差异(P<0.01)。
*means significant difference compared with the control (P<0.05);**means very significant difference compared with the control(P<0.01).
图4 细菌攻毒后乌苏里白鲑Leap-2基因的组织表达变化
Fig.4 Changes in tissue expression levels of Leap-2 gene in Ussuri cisco Coregonus ussuriensis with bacterial infection

3.2 Leap-2的组织表达模式及功能分析

前期研究发现,脊椎动物中的Leap-2基因表达模式有明显差异。在哺乳动物中,人体内Leap-2基因主要在肝脏中被合成,分泌到血液中,且在尿液中也发现了Leap-2基因的代谢物[7];猪体内Leap-2基因在肝脏、肠组织和肾脏中表达较高[24]。在鱼类中,卵形鲳鲹Trachinotus ovatus体内Leap-2基因在肝脏、脾和头肾中的表达量相对较高[13];鲤体内Leap-2基因在肝脏、头肾和脾中大量表达[9];草鱼体内Leap-2基因在除血液外的其他组织中广泛表达,且在肝脏中的表达量最高[8];而虹鳟体内Leap-2基因仅在肝脏中显著高表达[11]。本研究中,Leap-2基因在乌苏里白鲑9个组织中均有表达,并具有组织表达丰度差异性。其中,肝脏中表达量最丰富,其次为肠和肾,在肌肉中表达量最低,这表明在非应激条件下,Leap-2基因在乌苏里白鲑组织中有差异表达。综上所述,不同物种中的Leap-2基因表达模式存在差异,但在免疫组织中均有较高表达,推测其在多个物种的免疫应答调控过程中发挥着关键作用。

*表示与0 h有显著性差异(P<0.05);**表示与0 h有极显著性差异(P<0.01)。
Note:*means significant difference compared with infection in 0 h (P<0.05);**means very significant difference compared with infection in 0 h(P<0.01).
图5 嗜水气单胞菌攻毒后乌苏里白鲑肝脏中Leap-2蛋白的表达
Fig.5 Leap-2 protein expression in liver of Ussuri cisco Coregonus ussuriensis after infection of Aeromonas hydrophila

3.3 细菌感染后Leap-2基因表达模式的变化

抗菌肽作为生物免疫系统分泌的一类具有抗菌活性的免疫活性物质,具有广谱抗菌活性[25]。一般认为,革兰氏阴性菌表面的脂多糖和革兰氏阳性菌表面的磷壁酸带负电荷,而带正电荷的抗菌肽可以结合到带负电荷的细菌细胞膜表面,从而破坏细菌细胞的完整结构,进而起到抑菌的作用[26-27]。为了探究乌苏里白鲑的Leap-2基因在不同病原菌侵染下的表达模式,本研究中选择了革兰氏阴性菌(嗜水气单胞菌和杀鲑气单胞菌)及革兰氏阳性菌(金黄色葡萄球菌)对乌苏里白鲑进行免疫刺激。嗜水气单胞菌是淡水、污水、淤泥及土壤中常见的细菌,也是引起淡水养殖生物烂鳃病和赤皮病的主要病原细菌[28],在抗菌肽相关研究中,该菌作为外源刺激菌而被广泛应用[29-30]。草鱼经嗜水气单胞菌感染后,在肝脏、脾、肌肉、皮肤、肾中Leap-2基因表达显著上调[8]。而嗜水气单胞菌感染团头鲂后,Leap-2基因在肝脏、脾、鳃、脑中的表达上调[31]。本研究中,嗜水气单胞菌感染后,相对于对照组,Leap-2基因在肝脏、鳃、脾、皮肤、肾中的表达量均显著提升。为进一步验证该抗菌肽的免疫应答功能,本研究中利用Western印迹检测了嗜水气单胞菌感染后Leap-2在蛋白水平上的表达模式,研究结果证实了乌苏里白鲑应对病原物入侵时,Leap-2在蛋白水平的表达上调,推测其在免疫反应中具有调控作用。

杀鲑气单胞菌是鲑鳟鱼类常见的致病菌之一[32]。研究发现,抗菌肽Leap-2对杀鲑气单胞菌具有抑菌活性,在虹鳟中,杀鲑气单胞菌攻毒后的2 d,肠和皮肤中的Leap-2基因表达上调[11]。本研究中,杀鲑气单胞菌的感染诱导了Leap-2基因在乌苏里白鲑中的显著高表达,暗示乌苏里白鲑Leap-2基因可能参与该致病菌引起的免疫调节反应。本研究中,利用金黄色葡萄球菌对乌苏里白鲑进行感染,结果发现,乌苏里白鲑Leap-2基因的表达在所调查的6种免疫器官中均得到不同程度的表达上调。前期研究表明,西伯利亚鲟的Leap-2基因对金黄色葡萄球菌有显著的抗菌活性[16]。然而唇鱼骨Hemibarbus labeoLeap-2基因对金黄色葡萄球菌则无明显的抑制作用[33]。这些差异表达模式暗示Leap-2基因的诱导可能存在组织特异性和物种特异性。本研究中,在金黄色葡萄球菌攻毒后的2 h,鳃和脾中的Leap-2基因表达水平就表现出显著升高,这可能是由于鳃和脾是鱼类最主要的免疫器官所致。Leap-2基因的快速诱导表明,抗菌肽Leap-2可能在乌苏里白鲑抵御多种细菌的早期防御中发挥一定的作用,但关于该肽的抗菌活性的确定,仍需要通过多肽的合成试验进一步证明。

4 结论

1)本研究中克隆获得了乌苏里白鲑Leap-2基因,结合系统进化分析,推断该分子为硬骨鱼类Leap-2B型。

2)在乌苏里白鲑的各个组织中均检测到Leap-2基因,其中,肝脏中Leap-2基因的表达量最高。

3)经嗜水气单胞菌、杀鲑气单胞菌和金黄色葡萄球菌感染后,Leap-2基因在乌苏里白鲑各组织中的表达量均有上调,这表明抗菌肽Leap-2参与乌苏里白鲑应对外源干扰的免疫应答过程。

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Cloning and tissue expression of liver-expressed antimicrobial peptide Leap-2 in Ussuri cisco Coregonus ussuriensis exposed to bacterial infection

LIU Enhui1,HUANG Tianqing1,GU Wei1,WANG Bingqian1,ZHANG Yanping2,LI Chunyu3,XU Gefeng1*

(1.Key Laboratory of Freshwater Aquatic Biotechnology and Breeding,Ministry of Agriculture and Rural Affairs,Heilongjiang River Fisheries Research Institute,Chinese Academy of Fishery Sciences,Harbin 150070,China;2.Gansu Fisheries Research Institute,Lanzhou 730030,China;3.Xinjiang Tianyun Organic Agriculture Company Limited,Yili 835708,China)

AbstractTo understand the molecular structure and expression characteristics of liver-expressed antimicrobial peptide Leap-2 in Ussuri cisco Coregonus ussuriensis Berg,the open reading frame (ORF) of the Leap-2 gene was amplified from the liver tissue of Ussuri cisco with body weight of (30.0±1.2)g by PCR,and the Leap-2 amino acid sequence was analyze by bioinformatics software.The relative expression levels were detected in healthy tissues and tissues of Ussuri cisco intraperitoneally infected by Aeromonas hydrophila,Aeromonas salmonicida or Staphylococcus aureus at a dose of 100 μL/ind.of 1×106 CFU/mL by fluorescence quantitative real-time PCR (qRT-PCR).The results showed that Leap-2 gene (GenBank:MZ170050) had ORF region of 276 bp,which was cloned from the liver of Ussuri cisco by PCR.Leap-2 encoding 91 amino acids and its mature peptide region contained four highly conserved cysteine residues.Phylogenetic analysis showed that Ussuri cisco Leap-2 amino acid sequence was closely related to coho salmon Oncorhynchus kisutch,with the homology of 96.7%.Tissue expression showed that Ussuri cisco Leap-2 was the most abundant in the liver,followed by the intestine and kidney,with the minimal expression level in muscle.The up-regulated expression of Leap-2 was observed in all detected Ussuri cisco exposed to A.hydrophila,A.salmonicida,and S.aureus infection.Western blot revealed that the expression of Leap-2 protein was up-regulated within 24 h,indicating that Leap-2 was involved in the immune response of Ussuri cisco to bacteria.The finding may provide theoretical reference with understanding of the immune response of Ussuri cisco.

Key wordsCoregonus ussuriensis Berg;antimicrobial peptide;Leap-2 gene;Aeromonas hydrophila;Aeromonas salmonicida;Staphylococcus aureus;real-time PCR

中图分类号S 917.4;Q 786

文献标志码:A

DOI10.16535/j.cnki.dlhyxb.2021-163

文章编号:2095-1388(2022)03-0420-08

收稿日期2021-07-06

基金项目中央级公益性科研院所基本科研业务费专项(HSY202103M);财政部和农业农村部:国家现代农业产业技术体系资助(CARS-46);中国水产科学研究院科研业务费项目(2020TD32);农业财政专项“东北地区重点水域渔业资源与环境调查”

作者简介刘恩慧(1993—),女,研究实习员。E-mail:liuenhui@hrfri.ac.cn

通信作者徐革锋(1979—),男,博士,研究员。E-mail:xugefeng@hrfri.ac.cn